材料】1. 常规细胞培养仪器设备恒温水浴振荡器。
2. 培养液（dmem）胎牛血清（cbs）二甲基亚砜（dmso）
操作程序】1. 细胞实验室进行常规消毒，紫外照射40min以上。
2. 培养液（dmem.25％胰蛋白酶（trypsin）恒温水浴箱370c预热20min，备用。
3. 二甲基亚砜（dmso)在40c冰箱中冷藏30min，备用。
4. 从液氮保存罐中取出冻存管，立即放入400c水浴中，快速摇晃，直至冻存液完全融化。
5. 将细胞悬液移入15ml离心管，缓慢加入4ml培养液，离心（1000r/min，5min）。
6. 用培养液悬液混悬沉淀细胞，调整细胞浓度，方培养箱中培养。
7. 记录复苏日期。
注意事项】1. 取细胞的过程中注意带好防冻手套，护目镜。此项尤为重要，细胞冻存管可能漏入液氮，解冻时冻存管中的气温急剧上升，可导致**。
2. 冻存液的问题：冻存液的配置已是常识，在这里不作详述，但二甲基亚砜（dmso）对细胞不是完全无毒***，在常温下，二甲基亚砜对细胞的毒副作较大，因此，必须在1-2min 内使冻存液完全融化。
如果复苏温度太慢，会造成细胞的损伤，二甲基亚砜（dmso）最好选择进口产品。
3. 离心前须加入少量培养液。细胞解冻后二甲基亚砜浓度较高，注意加入少量培养液可稀释其浓度，以减少对细胞的损伤。
4. 离心问题：目前主要有两种见解。
一种是解冻后的细胞悬液直接吹打均匀后分装到培养瓶中进行培养，第二天换液。因为离心的目的是两个，去除dmso，去除死细胞，这个是标准流程，但对一般人来说，把握不好离心转速和时间，转的不够活细胞沉底的少，细胞就全被扔掉了，转过了活细胞会受压过大，死亡。此外在操作过程中容易污染，所以不推荐。
另一种说法为细胞悬液中含有二甲基亚砜（dmso），dmso对细胞有一定的毒***，所以须将离心后的液体前倒净，且一定倒干净。我在试验中按照常规的离心分装的方法进行复苏，结果无有异常。
5. 细胞贴壁少的问题：教科书中说明冻存细胞解冻时1ml细胞液要加10ml－15m培养液，而在我的试验中的经验总结为培养基越少细胞越容易贴附。
6. 复苏细胞分装的问题：试验中我的经验总结为复苏1管细胞一般可分装到1-2只培养瓶中，分装过多，细胞浓度过低，不利于细胞的贴壁。
7. 加培养基的量放入问题：这个量的多少的把握主要涉及到的问题是dmso的浓度，从如果你加培养基的太少，那么dmso的浓度就会比较大，就会影响细胞生长，从以前的资料来看，dmso的浓度在小于0.
5%的时候对一般细胞没有什么影响，还有一个说法是1％。所以如果你的冻存液的浓度是10％dmso的话那么加10ml以上的培养基就恰好稀释到了无害浓度。
一、原理。在不加任何条件下直接冻存细胞时，细胞内和外环境中的水都会形成冰晶，能导致细胞内发生机械损伤、电解质升高、渗透压改变、脱水、ph改变、蛋白变性等，能引起细胞死亡。如向培养液加入保护剂，可使冰点降低。
在缓慢的冻结条件下，能使细胞内水份在冻结前透出细胞。贮存在－130℃以下的低温中能减少冰晶的形成。
细胞复苏时速度要快，使之迅速通过细胞最易受损的－5～0℃，细胞仍能生长，活力受损不大。目前常用的保护剂为二甲亚砜（dmso）和甘油，它们对细胞无毒性，分子量小，溶解度大，易穿透细胞。
二、操作步骤。
一）冻存。1、消化细胞（同实验二），将细胞悬液收集至离心管中。
rpm离心10分钟，弃上清液。
3、沉淀加含保护液的培养，计数，调整至5×106/ml左右。
4、将悬液分至冻存管中，每管1 ml。
5、将冻存管口封严。如用安瓿瓶则火焰封口，封口一定要严，否则复苏时易出现爆裂。
6、贴上标签，写明细胞种类，冻存日期。冻存管外拴一金属重物和一细绳。
7、按下列顺序降温：室温→4℃（20分钟〕→冰箱冷冻室（30分钟）→低温冰箱（－30℃ 1小时）→气态氮（30分钟）→液氮。
注意：操作时应小心，以免液氮冻伤。液氮定期检查，随时补充，绝对不能挥发干净，一般30立升的液氮能用1～1.5月。
二）复苏。1、准备一个茶缸或1000ml的烧坏，内装2/3杯37℃的温水。
2、从液氮中取出冻存管、迅速置于温水中并不断搅动。使冻存管中的冻存物在1分钟之内融化。
3、打开冻存管，将细胞悬液吸到离心管中。
rpm离心10分钟，弃去上清液。
5、沉淀加10ml培养液，吹打均匀，再离心10分钟，弃上清液。
6、加适当培养基后将细胞转移至培养瓶中，37℃培养，第二天观察生长情况。
三、试剂和器材。
器材：液氮罐、冻存管（塑料螺口专用冻存管或安瓿瓶）、离心管、吸管、离心机等。
试剂：0.25％胰酶、培养基、含保护剂的培养基（即冻存液）
附：冻存液配制：
培养基加入甘油或dsmo，使其终浓度达5—20%。保护剂的种类和用量视不同细胞而不同。配好后4℃下保存。
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