2023年春外科实验安排

发布 2020-02-08 07:45:28 阅读 4034

2023年春季学期外科学实验课程安排。

第二周实验一手术基本技术操作一(手术人员的无菌准备)

第三周实验二手术基本技术操作二(器械的认识、使用与打结)

第四周实验三手术基本技术操作三(手术区**消毒、铺巾切开与止血、结扎、缝合、剪线)

第五周实验四更换敷料(换药)、拆线方法。

第六周实验五心肺复苏。

第七周实验六清创术与静脉切开。

第八周实验七离体肠管吻合术。

第九周实验八肠切除、活体肠吻合术。

第十周实验九阑尾切除术。

第十一周实验十开放性伤口的止血包扎。

第十二周实验十一脊柱损伤病人的搬运,四肢骨折现场急救外固定技术。

医学系外科教研组。

2023年3月3日。

外科试验的物品准备。

实验一手术基本技术操作(一)

无菌洗手刷(20把)、肥皂冻(10碗),洗手衣、手术衣、手套、拖鞋(各60件套),内装75%酒精泡手桶(10支)。

实验二手术基本技术操作(二)

常用手术器械10套;打结示教线一根(长30cm对半染成两种颜色),细丝线、粗棉线及尼龙线若干。

实验三手术基本技术操作(三)

1、带皮的动物肉或胃、肠等内脏,手套、手术刀、剪、止血钳、持针器、手术镊、缝针、缝线等。

2、外用**消毒液(2%碘酊和70%酒精棉球或0.5%碘伏)、卵圆钳、换药碗、无菌棉球或小无菌纱布块;无菌巾4块、巾钳4把、中单、大单。

实验四更换敷料(换药)、拆线方法。

换药碗/换药盘2个,有齿、无齿镊各1把或止血钳2把,手术剪1把(10组)。外用**消毒液,生理盐水,无菌棉球若干,引流物或根据伤口所选择的药物、敷料。胶布、剪刀、汽油或松节油、无菌棉签。

必要时备酒精灯、火柴、注射器。根据伤口需要酌情备用胸腹带或绷带。

实验五心肺复苏。

心肺复苏模拟人(1~2具)、酒精棉球若干、单层干纱布若干。

实验六清创术与静脉切开。

1、静脉切开包(尖组织刀、眼科剪、线剪、持针器、蚊式钳、手术镊、细三角针、细丝线、小孔巾)一个,输液装置一套,塑料导管一条,注射器、***品、等渗盐水等。

2、无菌肥皂液、等渗盐水、双氧水、敷料、胶布等。

3、 实验动物:狗、兔或羊(10只)。

实验七离体肠管吻合术。

经0.1%新洁尔灭消毒的动物肠管、手套、止血钳、小圆针、细丝线、剪刀、手术镊、持针器等。

实验八肠切除、活体肠吻合术。

1、 手套、手术衣、等渗盐水、阿托品、***、注射器、剖腹包、缝针、缝线(3~0肠线、1号及4号丝线)等。

2、 实验动物:狗、羊或兔(10只)。

实验九阑尾切除术。

1、 阑尾切除包、***、等渗盐水、缝针、敷料、无菌巾单、手套、手术衣等。

2、 实验动物:狗、羊或兔均可(10只)。

实验十开放性伤口的止血包扎。

开放性伤口模块、外用**消毒液、无菌纱布、棉垫、绷带、三角巾、止血带、记录牌、笔、胶布等。

实验十一脊柱损伤病人的搬运,四肢骨折现场急救外固定技术。

1、担架或木板、颈托、固定带、棉垫。

2、夹板、固定带,三角巾、绷带、棉垫等。

医学系外科教研组。

2023年3月3日。

常用***及用法。

一、基础麻醉用药

1、硫喷妥钠。

实验剂量和方法:狗静脉注射20~25mg/kg体重;兔静脉注射7~10mg/kg体重。静脉注射速度以15秒钟注射2ml左右进行。

小鼠1%溶液腹腔注射0.1~0.3ml/只;大鼠0.

6~0.8ml/只。

2、苯巴比妥钠。

该药作用持久,应用方便,在普通麻醉用量下对动物呼吸、血压和其他功能无多大影响。通常在实验前0.5~1h用药。

使用剂量和方法为狗、猫腹腔注射80~100mg/kg,静脉注射70~120mg/kg;家兔腹腔注射150~200mg/kg。

3、戊巴比妥钠。

此药麻醉时间不很长,一次给药有效时间可延续3~5小时,所以十分适合一般实验求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑作用。用时配成1~3%生理盐水溶液,配好的药液的常温下放置1~2个月不失药效。

静脉或腹腔注射后很快进入麻醉期。使用剂量为:狗、猫、兔静脉注射30~35mg/kg,腹腔注射40~45mg/kg,皮下注射40~50mg/kg。

大小鼠静脉或腹腔注射35~50mg/kg。

二、局麻药。

1、普鲁卡因,是常用的局麻药之一。对粘膜的穿透力弱。一般不用于表面麻醉,常局部注射用于浸润麻醉、传导麻醉、蛛网膜下腔麻醉和硬膜外麻醉。

2、利多卡因,是目前应用最多的局麻药。相同浓度下与普鲁卡因相比,利多卡因具有起效快、作用强而持久、穿透力强及安全范围较大等特点,同时无扩张血管作用及对组织几乎没有刺激性。可用于多种形式的局部麻醉。

三、麻醉注意事项。

静脉注射必须缓慢,同时观察肌肉紧张性、角膜反射和对**夹捏的反应,当这些活动明显减弱或消失时,立即停止注射。配制的药液浓度要适中,不可过高,以免麻醉过急;但也不能过低,以减少注入溶液的体积。

麻醉时需注意保温。麻醉期间,动物的体温调节机能往往受到抑制,出现体温下降,可影响实验的准确性。此时常需采取保温措施。

保温的方法有,实验桌内装灯,电褥,台灯照射等。无论用哪种方法加温都应根据动物的**体温而定。常用实验动物正常体温:

猫为38.6℃±1.0℃,兔为38.

4℃±1.0℃,大鼠为39.3℃±0.

5℃。作慢性实验时,在寒冷冬季,麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平。

医学系外科教研组。

2023年3月3日。

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